海星:Luc标记细胞裸鼠皮下成瘤操作步骤+常见问题详解|实验成功率翻倍

诺扬生物
2026-05-09

Luc细胞株做裸鼠皮下成瘤,为了让肿瘤细胞能顺利生长,最关键的思路是状态最好、数量足够的Luc细胞注射到裸鼠血供丰富的位置

Luc细胞裸鼠皮下成瘤操作步骤

Luc细胞裸鼠皮下成瘤整个流程主要包括以下四个环节:


1. 细胞准备:高活力的细胞是成功基石

这是决定成瘤成败最关键的一步,核心点是确保接种时细胞处于生命力的巅峰状态

· 细胞状态与培养细胞状态是首要因素。需使用含Luc报告基因的细胞株,在合适的培养基中培养,确保细胞处于对数生长期、活力充沛建议在实验前对细胞进行支原体检测,以排除污染对实验结果的潜在影响。

· 细胞收集与计数消化、离心收集细胞后,用无菌PBS或无血清培养基重悬,并立即进行计数。通过台盼蓝染色等方法,确保细胞活率大于95%。初次建模的细胞量建议参考相关文献或进行预实验来确定。下图是一个常见的细胞量参考:

细胞类型(Source)

推荐接种量(Inoculum Size)

鼠源细胞系(Murine cell lines)

较低, 约1*106-5*106个/只

人源细胞系(Human cell lines)

较高, 约2×10-1×10个/只

· 重悬与待用:将细胞用PBS或培养基稀释至所需浓度(如1×10⁷/mL),体积通常为100-200μL,并始终放置在冰盒上以减缓细胞代谢、维持活力。

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2. 裸鼠准备:理想的“宿主”创造良好环境
选择合适的动物品系和周龄,是肿瘤能够成功“落户”的保障。

· 动物选择

品系最常用的是 BALB/c-nu/nu 裸鼠。如果某些细胞株成瘤困难,可以考虑免疫缺陷更彻底的NOD-SCID或NSG小鼠。

周龄4-6周龄是理想的窗口,该阶段小鼠的免疫系统尚未成熟,对肿瘤的排斥反应最弱,成瘤率最高。

性别通常根据细胞类型选择,如乳腺癌细胞多用雌鼠,前列腺癌细胞多用雄鼠,以模拟生理环境。一般保持同一性别以减少变异。

· 饲养与准备裸鼠应饲养于SPF级(无特定病原体) 动物房中。新到动物建议适应环境至少1周再进行操作,以减少应激反应。

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3.接种与注射:精准地将细胞送到对的位置

注射操作直接关系到细胞能否在宿主体内定植,对最终成活率影响很大。
· 接种部位:腋窝皮下是最常用的位置,该区域血供丰富,利于肿瘤生长,且操作方便。
· 接种方法:
用酒精棉球消毒接种区皮肤。
用一手提起小鼠背部皮肤,使皮下形成一个
“空隙”。
1mL注射器吸取细胞悬液,排尽空气。
针头与皮肤呈30°角刺入皮下,确认针头在皮下后可稍微前后移动。(向前方穿行,注射前针头稍微动一动,能动说明在皮下,否则可能在皮内或者肌肉内
针头在皮下走一段再开始缓慢推注,注射体积100-200μL。可肉眼观察到皮肤下形成一个小“鼓包”。
注射完毕后缓慢退出针头,可轻按片刻以防细胞液渗出。
· 成瘤辅助剂对于成瘤性较差的细胞株,可将细胞与Matrigen胶(基底胶)按一定比例混合,并保持在冰上(防止提前凝固)共同注射。Matrigen能为细胞提供类似细胞外基质的支架,显著提高成瘤率。

4.后续监测:科学地观察与记录
· 成瘤观察时间线
皮下接种通常1-2周后可在局部触摸到米粒样硬结,一个月后直径可达1cm左右。
其他接种方式尾静脉注射(模拟血行转移)或原位接种(如肝、乳腺脂肪垫)的成瘤情况取决于模型特点。
· 肿瘤测量
肉眼观察每日观察小鼠精神、活动和体重变化,以及接种部位有无红肿破溃。
游标卡尺测量一般从接种7天开始,2-3天用游标卡尺测量肿瘤的长径(L)和短径(W),按公式计算体积V (mm³) = 0.5 × L × W²。并绘制肿瘤生长曲线。
活体成像(BLI)监测在实验的关键时间点(如第7, 14, 21天等),通过活体成像系统检测Luc信号。操作流程通常为:
麻醉裸鼠
腹腔注射D-荧光素(D-Luciferin),剂量通常为150 mg/kg
注射后等待10-20分钟
将小鼠放入成像仪,设置适当的曝光时间,采集发光图像并分析信号强度(单位:p/sec/cm²/sr)。
· 实验终止为遵循动物福利原则,当肿瘤体积超过1500-2000 mm³、平均直径超过20 mm或肿瘤出现溃烂、小鼠极度消瘦时,应及时终止实验。

常见问题详解

如果遇到成瘤失败或效果不理想,可以从以下方面系统排查:

· 细胞问题细胞活力差、支原体污染、处于非对数生长期。

· 免疫或动物问题裸鼠周龄过大(免疫力增强)或品系免疫排斥反应较强。

· 操作问题注射位置不对(如注入肌肉层内)、细胞液外渗或形成气泡。

· 成瘤性差异不同细胞株差异大,如HCT116(结肠癌)成瘤性好,MCF-7 (乳腺癌)较难成瘤。

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