雅酶FluorScreen培养基:
让每个阳性克隆“发光可见”
最快速度锁定高产抗体株🎯
单克隆抗体研发的路上,这些场景是否似曾相识?

如果上述痛点戳中了您,
这篇文章或许能为您打开一扇新大门💡

1975年,Köhler和Milstein发明杂交瘤技术,让B细胞与骨髓瘤细胞“联姻”,获得无限增殖+分泌特异性抗体的双重能力——这是免疫学的里程碑,也是单抗制备的基石。
然而半个世纪过去,有限稀释法仍是杂交瘤技术效率的枷锁。
痛点一 /周期冗长,资源黑洞
2~3轮亚克隆,每轮10~15天,总耗时1~2个月
铺板、换液、标记、镜检,机械重复消耗人力
单克隆率仅60%~70%,大量空孔与多细胞孔迫使实验重来
痛点二 /高产株“沉默消失”
液体培养中,细胞自由竞逐。快速增殖的低产株压制慢生长的高产株——
你想要的"冠军",恰恰最难存活。最终抗体产量与质量双双折损。
痛点三 /假阳性高
传统ELISA筛选假阳性率>20%
阳性克隆需反复验证,研发进度不可控

想要避开这些痛点?
雅酶FluorScreen半固体培养基正是理想之选——
开瓶即用,其采用甲基纤维素半固体培养基和荧光抗原示踪技术,正在重写杂交瘤筛选的规则。


原理一
半固体环境
克隆“独门独院”
单个细胞固定位置增殖,形成物理分离的独立集落。无接触、无竞争,每株真实分泌抗体能力被完整保留。
原理二
荧光示踪
阳性“显形”
荧光标记抗原(488,FITC等)直接掺入半固体培养基,特异性抗体分泌克隆周围形成荧光晕圈——
“如同雾夜中点亮的路灯,阳性克隆无处遁形。”

与传统ELISA筛选相比:
抗原状态
雅酶FluorScreen
半固体液相,天然构象完整保留
ELISA筛选
固相包被,构象易改变
检测方式
雅酶FluorScreen
直接荧光,一步完成
ELISA筛选
间接显色,步骤繁琐
信息维度
雅酶FluorScreen
克隆定位,分泌能力直观评估
ELISA筛选
仅知阴阳,不知位置


省时省力
筛选与克隆一步完成,周期短成本低;
*也可用于亚克隆筛选。

保真表位
液相半固态环境抗原抗体结合,表位构象更天然,优于传统ELISA固相筛选;

可视追踪
荧光信号直观定位阳性克隆,强度指示分泌水平,避免阳性克隆丢失。
雅酶FluorScreen VS 有限稀释法



雅酶FluorScreen
传统有限
稀释法
FluorScreen
优势分析
筛选周期(融合→阳性单克隆)
9天
(一步筛选)
1.5~2.5
个月
周期
更短
假阳性率
几乎无假阳性
>20%
假阳性
率更低
筛选与克隆一步完成
可以
不可以
筛选与克隆
一步完成,
周期短成本低

案例1:荧光标记真核重组抗原筛选
抗体靶点:CD63
细胞密度(初筛):1×10⁶个/孔(6孔板)
荧光抗原浓度:50~100nM
结论:如图1所示,融合后初次筛选,一步筛选得到阳性单克隆细胞株。

图1. 单克隆细胞株279-1C1和279-1E1的分离。(A)阳性克隆图像。(B)单克隆细胞株279-1C1和279-1E1培养上清的ELISA验证。
案例2:原核重组抗原筛选
抗体靶点:GFP
细胞密度(亚克隆):500个/孔(6孔板)
荧光抗原浓度:50~100nM
结论:如图2所示,亚克隆筛选得到阳性单克隆细胞株。

图2. 单克隆细胞株mR1-001-8的分离。(A)阳性克隆图像。(B)单克隆细胞株mR1-001-8培养上清的ELISA验证。
案例3:荧光标记多肽抗原筛选
抗体靶点:Integrin alpha 4/CD49D细胞密度(亚克隆):500个/孔(6孔板)荧光抗原浓度:50~100nM结论:如图3所示,亚克隆筛选得到阳性单克隆细胞株。

图3. 单克隆细胞株162-2-1D1的分离。(A)阳性克隆图像。(B)单克隆细胞株162-2-1D1培养上清的ELISA验证。



产品组成
甲基纤维素、血清、HAT(次黄嘌呤-氨基蝶呤-胸苷)筛选体系、青链霉素双抗、酚红指示剂及杂交瘤增殖所需其它关键添加剂

适用范围
小鼠来源杂交瘤细胞