雅酶:9天,直接给单抗筛选降维打击!

2026-04-30


雅酶FluorScreen培养基:


让每个阳性克隆“发光可见”

最快速度锁定高产抗体株🎯

单克隆抗体研发的路上,这些场景是否似曾相识?



如果上述痛点戳中了您,

这篇文章或许能为您打开一扇新大门💡




1975年,Köhler和Milstein发明杂交瘤技术,让B细胞与骨髓瘤细胞“联姻”,获得无限增殖+分泌特异性抗体的双重能力——这是免疫学的里程碑,也是单抗制备的基石。

然而半个世纪过去,有限稀释法仍是杂交瘤技术效率的枷锁。



痛点一 /周期冗长,资源黑洞



2~3轮亚克隆,每轮10~15天,总耗时1~2个月

铺板、换液、标记、镜检,机械重复消耗人力

单克隆率仅60%~70%,大量空孔与多细胞孔迫使实验重来


痛点二 /高产株“沉默消失”


液体培养中,细胞自由竞逐。快速增殖的低产株压制慢生长的高产株——

你想要的"冠军",恰恰最难存活。最终抗体产量与质量双双折损。


痛点三 /假阳性高


传统ELISA筛选假阳性率>20%

阳性克隆需反复验证,研发进度不可控



想要避开这些痛点?

雅酶FluorScreen半固体培养基正是理想之选——

开瓶即用,其采用甲基纤维素半固体培养基荧光抗原示踪技术,正在重写杂交瘤筛选的规则。

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原理一

半固体环境

克隆“独门独院”

单个细胞固定位置增殖,形成物理分离的独立集落。无接触、无竞争,每株真实分泌抗体能力被完整保留。

原理二

荧光示踪

阳性“显形”

荧光标记抗原(488,FITC等)直接掺入半固体培养基,特异性抗体分泌克隆周围形成荧光晕圈——


“如同雾夜中点亮的路灯,阳性克隆无处遁形。”


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与传统ELISA筛选相比:

抗原状态

雅酶FluorScreen

半固体液相,天然构象完整保留

ELISA筛选

固相包被,构象易改变


检测方式

雅酶FluorScreen

直接荧光,一步完成

ELISA筛选

间接显色,步骤繁琐



信息维度

雅酶FluorScreen

克隆定位,分泌能力直观评估

ELISA筛选

仅知阴阳,不知位置




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省时省力

筛选与克隆一步完成,周期短成本低;


*也可用于亚克隆筛选。

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保真表位

液相半固态环境抗原抗体结合,表位构象更天然,优于传统ELISA固相筛选;

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可视追踪

荧光信号直观定位阳性克隆,强度指示分泌水平,避免阳性克隆丢失。



雅酶FluorScreen VS 有限稀释法


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FluorScreen

筛选

有限稀释法

筛选

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雅酶FluorScreen

传统有限

稀释法

FluorScreen

优势分析

筛选周期(融合→阳性单克隆)

9天

(一步筛选)

1.5~2.5

个月

周期

更短

假阳性率

几乎无假阳性

>20%

假阳性

率更低

筛选与克隆一步完成

可以

不可以

筛选与克隆

一步完成,

周期短成本低


案例1:荧光标记真核重组抗原筛选

抗体靶点:CD63

细胞密度(初筛):1×10⁶个/孔(6孔板)

荧光抗原浓度:50~100nM

结论:如图1所示,融合后初次筛选,一步筛选得到阳性单克隆细胞株。

图1. 单克隆细胞株279-1C1和279-1E1的分离。(A)阳性克隆图像。(B)单克隆细胞株279-1C1和279-1E1培养上清的ELISA验证。



案例2:原核重组抗原筛选

抗体靶点:GFP

细胞密度(亚克隆):500个/孔(6孔板)

荧光抗原浓度:50~100nM

结论:如图2所示,亚克隆筛选得到阳性单克隆细胞株。


图2. 单克隆细胞株mR1-001-8的分离。(A)阳性克隆图像。(B)单克隆细胞株mR1-001-8培养上清的ELISA验证。


案例3:荧光标记多肽抗原筛

抗体靶点:Integrin alpha 4/CD49D细胞密度(亚克隆):500个/孔(6孔板)荧光抗原浓度:50~100nM结论:如图3所示,亚克隆筛选得到阳性单克隆细胞株。

图3. 单克隆细胞株162-2-1D1的分离。(A)阳性克隆图像。(B)单克隆细胞株162-2-1D1培养上清的ELISA验证。



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产品组成

甲基纤维素、血清、HAT(次黄嘌呤-氨基蝶呤-胸苷)筛选体系、青链霉素双抗、酚红指示剂及杂交瘤增殖所需其它关键添加剂

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适用范围

小鼠来源杂交瘤细胞

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