血清非人工产品，沉淀出来系自然现象，沉淀主要是纤维蛋白原，其次是盐析出。如磷酸钙等，还有一些胆固醇和脂肪酸以及其他蛋白析出物质等

血清热灭活、37℃培养 、反复冻融、溶解过程中没有摇匀、伽马射线照射、长期存放在 2-8°C、血清加入到RPMI 1640中时、pH升高时、在培养板或培养皿中，培养基的蒸发等等因素都会导致沉淀的增加。

技术人员对此问题有过深入研究证明，血清沉淀对细胞的生长没有影响，但有一个例外：沉淀对巨噬细胞的培养会有一些影响。

“G*品牌的胎牛血清没有预老化,如果存放在2-8℃，血清中的各种蛋白或酯类有可能会凝聚析出,出现沉淀或混浊. 这种不会影响血清对对细胞的促生长作用.我们建议把血清存放在 –20℃，并避免反复冻融。S*品牌胎牛血清说明书中说: “在融化过程中混浊多絮状沉淀，这种现象对多数血清来说是正常的，并不影响其使用质量。但它影响血清的外观，影响瓶与瓶之间的一致性。

检测血清是否被污染最好的方法是将血清接种到血酯板上，培养后看是否有菌落形成。

在1000x显微镜下，有经验的通过观察细胞液状态和常见细菌的外形即可鉴别，或者通过有无革兰氏染色的细菌，也可以判断血清是否被污染。

如想去除这些絮状沉淀物，可将血清分装到无菌离心管中，以400g离心，上清液即可直接加入到培养液中使用。不要以过滤的方式去除这些絮状沉淀物，因为可能阻塞滤膜。

将血清从冷冻箱取出后，先置于2-8℃冰箱12-24小时左右使之溶解，然后在室温下使之全溶。但必须注意的是，溶解过程中必须规则地轻轻摇晃均匀。

切勿将刚刚从-20℃冰箱里拿出来的血清直接放在水浴中，无论室温的水或者37℃的水，因为在水浴中血清迅速融化，很大的温差(-20℃到37℃，温差为57℃)极其容易造成血清产生沉淀。

直接放65℃水浴中更是极其残忍的做法，是对血清的亵玩，对科学规则的粗暴践踏!

需要长期保存的血清有必要储存于-20℃ - 70℃ 低温冰箱中。4℃冰箱中保存时刻切勿超过1个月。由于血清结冰时体积会增加约10%，因而，血清在冻入低温冰箱前，有必要预留一定体积空间，不然易发生污染或玻璃瓶冻裂。大包装的瓶装血清冻结需采用逐渐冻结法:-20℃ 至 -70℃ 低温冰箱中的血清放入4℃冰箱中溶解。然后移入室温，待全部溶解后再分装。在溶解过程中需不断悄悄摇晃均匀(小心勿形成气泡)，使温度与成分均一，削减沉积的发作。切勿直接将血清从-20℃进入37℃融化，温差大的情况下血清容易形成蛋白质凝聚而出现沉积和沉淀絮状物。

热灭活是指56℃， 30分钟加热已彻底冻结的血清。加热过程中须规矩摇晃均匀。目的是使血清中的补体成分(complement)灭活。除非有必要，一般不建议做此热处理，因为热处理会形成血清沉积增多，而且还会影响血清的质量。补体参与反应有: 平滑肌细胞收缩、 肥大细胞和血小板释放组胺、 增强吞噬作用、促进淋巴细胞和巨噬细胞发作化学趋化和活化。相关研究的使用者可以考虑血清增加热灭活处理。

原则上血清添加量不要太多，通常分为5%、10%、20%几档，部分细胞原代提取时会使用20%血清，大部分细胞正常培养时会使用10%的血清浓度。至于某一株细胞适应什么样的血清浓度，还需要根据细胞特性、实验目的做测试和调校。

血清开始进行试用时，如果是重新复苏细胞，建议用原培养体系进行细胞复苏，待细胞状态进入最优状态后再进行测试。测试时不建议直接100%直接换成新血清体系进行培养，而应该按照比例进行梯度替换(例如，首次换液按照新旧体系1:3，第二次换液1:1，第三次换液3:1，而后完全替换。对于一些对培养体系比较敏感的细胞，可以进一步优化替换比例。)通过这种方法可以避免细胞因环境改变而出现应激或者异常造成不必要的损失。

根据文献显示血清和血浆在4℃条件储存2小时，血清中的成分就会发生变化，所以建议用户在使用血清要分装成自己常用的规格，建议现配现用。如果不能实现现配现用的话，配好的完全培养基在4℃保存的时间不要超过1周，如果期间使用频次较高或恢复室温次数较多时，能够保存的时间还会减少。

血清批间差是客观存在的，因为血清制品来源于天然活体，供体牛只的生理状况、健康状况均不同，且受饲养环境的地形、风貌、饮食、水源等影响，体内各类蛋白、生长因子和酶类的含量均有巨大差异，所以血清具有含量复杂且不固定的特性，批间差异也是有可能的，因此选择批间差异小的血清不仅可以保证血清质量，确保细胞培养效果，还能减少由于批间差异带来的使用前测试，且避免实验结果的不可重复性。

Cellmax胎牛血清最大限度控制血清的牛龄、环境，工艺以及各种差异因素。单批次生产量可达2500L，能保证血清降低批间差和持续供应的稳定性。

建议您可以一次购进多瓶同批次的血清或者批量很大的批号血清(血清效期通常为5年，建议您一次购买足够使用1年以上的用量)，以减少由于批次的差异对您实验的影响。